mail 與水生動物疾病召集人陳媺玫副教授聯絡
友善列印 友善列印
套拉症
疾病代碼: DIS00123
建立日期: 2008/12/22
更新日期: 2012/07/16
作 者: 涂堅
中文病名: 套拉症
英文病名: Taura syndrome
疾病描述: 1.病原概述
病原型別: 病毒
病原環境: 淡鹹水海水
學名:Taura syndrome virus
病名(及俗名):套拉症
最早發現者:最早由Bonami(1997)、Mari (2002)發現。
OIE狀況:表列(Listed)。
病原摘要:
病毒目前暫定在Dicistroviridae科。 病毒顆粒為 32 nm,不含封套、二十面體、、浮力密度為1.338 g/ml。基因組為線狀、正端單股RNA 病毒,由10205個核苷酸組成。不具有3’ poly-A 尾巴。基因組包含兩個大的開放讀取區(ORF);ORF 1 包括非結構蛋白,ORF 2包括結構蛋白,三個主要核衣蛋白為 VP1, VP2, VP3 (55, 40及24 kDa)。 病毒在細胞質內複製。本 病毒目前依據VP1核酸序列可分為三個基因型:美洲型、東南亞型及貝里斯型(Belize group)。
人畜共通:非人畜共通傳染病
病原分類
2.病原分類
別名:
命名沿革:
疾病特性:(感染組織及器官:感染路徑、好發組織器官、宿主)
主要感染宿主為太平洋白蝦Litopenaeus vannamei)及太平洋藍蝦L. stylirostris)。本 病毒主要感染的對屬為Litopenaeus,其他對屬雖會感染但無症狀出現。其他文獻中會感染的對包括屬有L. setiferus, L. schmitti, Penaeus monodon, Metapenaeus ensis, Fenneropenaeus chinensis, Marsupenaeus japonicas, Farfantepenaeus aztecus, F. duorarum。主要感染器官為外殼下的上皮細胞(皮下組織)、前、後腸、、附肢、結締組織、造血組織、淋巴器官及綠腺。
感染途徑為水平感染或垂直感染,主要為經口食入遭含 病毒 糞便污染的食物、水或感染的組織。另外由於感染殘存的種可終身帶,所以被懷疑垂直感染可能發生,但迄今並未有科學試驗確認。

臨床症狀及病理學:
急性色素細胞會擴散,隻整體呈現灰色,尾扇及腹足會呈現特別的,因此被稱為紅尾病。仔細檢查有時可發現尾扇及腹足外殼下的上皮細胞出現壞死,這種通常內沒有食物。
轉型期(復原期)可在蝦發現許多不規則多發性黑色素沉著
慢性期因經過,無任何症狀可見。

組織病理學檢查,體外、附肢、、後及前腸的上皮細胞呈現多發性局部壞死。皮下結締組織、肌肉及綠腺也都被感染。在壞死區的感染細胞嗜伊紅性增加、核濃縮核崩解壞死細胞質散至組織形成嗜伊紅性至微嗜鹼性橢圓體,伴隨核濃縮核崩解碎片,形成一種”散彈槍擊發所造成碎片”的景象,此為本病的特異性病理變化;但是此時淋巴器官小管卻無任何病變。若是外上皮細胞及上皮細胞及淋巴器官小管同時有上述”散彈槍擊發所造成碎片”病變,則應該考慮為黃頭病引起。

疾病型態及流行病學:(急性或慢性型態、器官傳播分佈情形)
耐過本病的急性期及轉型期的會轉為慢性期的終身帶 病毒會隱藏在淋巴器官終身排。本病主要侵害白蝦後期蝦苗,常在放養後兩週至六週間發病。臨床上可分為三期:急性期(大量致死)、轉型期(短暫)及慢性期(帶原者(carrier)期)。
急性期時,外上皮是最嚴重的感染組織。慢性期時淋巴器官變成主要感染器官。白蝦急性期時,可導致40-90%的死亡率;但是藍蝦卻無大礙。本病的急性期耐過會轉為慢性期的終身帶,這種不顯性的感染是造成本病散佈的主要原因。



病原致病性意義:(實際魚場及田間發病、抗藥性等情形)
實際發生率不定。在發病疫區,養殖類蝦苗發生情形可由完全沒發生到高達100%發生率。
診斷方法: 一級初步診斷:出現特異性的外觀形態(紅尾、黑色素斑塊)
二級初步診斷:組織病理學檢查
三級初步診斷:無
一級確定診斷:生物接種法
二級確定診斷:組織病理學特徵
三級確定診斷:以RT-PCR進行增幅、定序及基因庫比對
RT-PCR引子如下(產物為231 bp)
9992F: 5'-AAG-TAG-ACA-GCC-GCG-CTT-3'
9195R: 5'-TCA-ATG-AGA-GCT-TGG-TCC-3'
PCR反應液:primers (0.46 µM each), dNTPs (300 µM each), rTth DNA polymerase (2.5 U/50 µl, Roche), manganese acetate (2.5 mM), in 5 × EZ buffer (25 mM Bicine, 57.5 mM potassium acetate, 40% [w/v] glycerol, pH 8.2).
PCR條件:先在60°C for 30 minutes, followed by 94°C for 2 minutes合成cDNA。然後進行40循環(denaturation at 94°C for 45 seconds, and annealing/extension at 60°C for 45 seconds. A final extension step for 7 minutes at 60°C)。
治療方法: 無法治療
預防控制方法: 詳細討論疫苗發展現況及飼養管理控制現況
1.在疫區儘量飼養野生孵化的白蝦後期蝦苗,勿購買人工孵育者;因前者抵抗力較強。.
2.購買定期以RT-PCR篩選種蝦及蝦苗不含TSV蝦場繁殖的蝦苗。
3.在疫區放養具有抵抗性的蝦種如藍蝦。
4.撲滅本病包括整場淘汰、消毒廠房、設備及蝦池、避免由林儘蝦池引進帶毒蝦苗等。
相關圖片:
參考文獻: 1.Bonami J.R., Hasson K.W., Mari J., Poulos B.T. & Lightner D.V. (1997). Taura syndrome of marine penaeid shrimp: characterization of the viral agent. J. Gen. Virol., 78, 313-319.

2.Chang Y.S., Peng S.E., Yu H.T., Liu F.C., Wang C.H., Lo, C.F. & Kou G.H. (2004). Genetic and phenotypic variations of isolates of shrimp Taura syndrome virus found in Penaeus monodon and Metapenaeus ensis in Taiwan. J. Gen. Virol., 85, 2963-2968.

3.Dhar A.K., Roux M.M. & Klimpel K.R. (2002). Quantitative assay for measuring the Taura syndrome virus and yellow head virus load in shrimp by real-time RT-PCR using SYBR Green Chemistry. J. Virol. Methods, 104, 69-82.

4.Fauquet C.M., Mayo M.A., Maniloff J., Desselberger U. & Ball L.A. (2005). Virus Taxonomy. Classification and Nomenclature of Viruses. Eighth Report of the International Committee on Taxonomy of Viruses. Elsevier Academic Press, 1259 pp.

5.Hasson K.W., Lightner D.V., Mohney L.L., Redman R.M., Poulos B.T. & White B.L. (1999). Taura syndrome virus (TSV) lesion development and the disease cycle in the Pacific white shrimp Penaeus vannamei. Dis. Aquat. Org., 36, 81-93.

6.Hasson K.W., Lightner D.V., Poulos B.T., Redman R.M., White B.L., Brock J.A. & Bonami J.R. (1995). Taura Syndrome in Penaeus vannamei: Demonstration of a viral etiology. Dis. Aquat. Org., 23, 115-126.

7.Lightner, D.V. (2005). Biosecurity in shrimp farming: pathogen exclusion through use of SPF stock and routine surveillance. J. World Aquaculture Soc., 36, 229-248.

8.Lightner D.V., Redman R.M., Hasson K.W. & Pantoja C.R. (1995). Taura syndrome in Penaeus vannamei (Crustacea: Decapoda): gross signs, histopathology and ultrastructure. Dis. Aquat. Org., 21, 53-59.

9.Mari J., Poulos B.T., Lightner D.V. & Bonami J.R. (2002). Shrimp Taura syndrome virus: genomic characterization and similarity with members of the genus Cricket paralysis-like viruses. J. Gen. Virol., 83, 917-928.

10.Nunan L.M., Poulos B.T. & Lightner D.V. (1998). Reverse transcription polymerase chain reaction (RT-PCR) used for the detection of Taura Syndrome Virus (TSV) in experimentally infected shrimp. Dis. Aquat. Org., 34, 87-91.

11.Nunan L.M., Tang-Nelson K. & Lightner D.V. (2004). Real-time RT-PCR determination of viral copy number in Penaeus vannamei experimentally infected with Taura Syndrome Virus (TSV). Aquaculture, 229, 1-10.

12.Tang K.F.J., Wang J. & Lightner D.V. (2004). Quantitation of Taura Syndrome Virus by real-time RT-PCR with a TaqMan assay. J. Virol. Methods, 115, 109-114.

13.Tu C., Huang H.T., Chuang S.H., Hsu J.P., Kuo S.T., Li N.J., Hus T.L., Li M.C. & Lin S.Y. (1999). Taura syndrome in Pacific white shrimp Penaeus vannamei cultured in Taiwan. Dis. Aquat. Org., 38, 159-161.
參考連結:
檔案下載: