蛙病毒感染症

與水生動物疾病召集人陳媺玫副教授聯絡

友善列印

蛙病毒感染症

建立日期：

2009/03/04

更新日期：

2009/12/14

作者：

謝嘉裕

中文病名：

蛙病毒感染症

英文病名：

Amphibian ranavirus: Ranavirus disease

疾病描述：

1.病原概述
病原型別：病毒
病原環境：淡水
學名：Frog Virus 3 (FV-3)
病名(及俗名)：蛙病毒感染症、蛙病毒病

最早發現者：Granoff, A., Came, P. E. and Breeze, D. C. (1966)
ＯＩＥ狀況：表列(Listed)
病原摘要：
病毒顆粒大，直徑介於120 至 300 nm，二十面體，直線型雙股DNA病毒。典型蛙病毒基因組大小為100-210 kbp，環狀排列並且終端重複，病毒可具封套(由細胞膜來)或不具封套（於細胞質內及核內複製時）。

病原分類
蛙病毒歸類於虹彩病毒科蛙病毒屬
Iridoviridae科，Frog Virus屬
疾病特性

感染組織及器官：

疾病型態及流行病學：急性或慢性型態、器官

傳播分佈情形
水平傳染藉水源傳播，垂直感染亦有可能但尚未有試驗證實。
宿主
全部兩棲類皆易有感受性，甚至也可能感染魚類及爬蟲類繼而造成死亡。全年齡皆具有感受性。

在兩棲宿主上生活史
至今尚不清楚。

相關因素
此疾病的發生因素以溫度變化明顯影響蛙病毒感染症的發生，曾有報告指出季節變化影響疾病的盛行率及爆發的嚴重程度。

地理學分佈：
4.1. Region
美國、亞洲、太平洋地區及歐洲
4.2. Countries
目前已知有加拿大、美國、委內瑞拉、澳洲、中國、英國及克羅埃西亞共和國

臨床症狀及病理學：
通常外觀肉眼上無明顯病變，但曾有感染ATV的虎螈tiger salamanders (Ambystoma tigrinum)皮膚上出現水泡，在英國亦有報告指出四肢遠端皮膚出現壞死及潰瘍的病灶。
肉眼觀察與病變:
除了骨骼肌、平滑肌及心肌外在所有的組織皆有感染被證實,儘管曾經有從骨骼肌中分離出病毒之報告，但很有可能是肌肉組織間的血液。

顯微及組織病變:
在皮膚的蘇木紫-伊紅染色切片中，上皮細胞的增生破壞正常的複層扁平上皮結構，且上皮深層常發生壞死，但較少發生皮膚的潰瘍。在腎臟、脾臟等造血組織甚至是肝臟都可見點狀壞死灶，特別是肝細胞更容易見到質內包涵體的出現。

診斷方法：

8.1. 監控方法(Surveillance methods)
可以採集蛙皮膚或蝌蚪口器上皮以顯微鏡進行濕壓片或抹片染色後進行檢查，皮膚及蝌蚪口器進行組織病理學檢查、免疫組織化學染色、聚合酶鏈反應(標準型PCR或即時定量PCR)及分離培養等(Hyatt et al. 2007, Speare et al. 2005)。不論蛙群有無死亡發生皆適用於一般例行性檢測(Speare et al. 2005)。一般而言，在不犧牲生命下即可進行常態監控檢查，但若是行組織病理學檢查時就必須截除腳趾尖端。即時定量PCR用於監控檢測具有高敏感性與特異性(Hyatt et al. 2007)。

8.2. 推測方法(Presumptive methods)
無標準推測依據。但是在熱帶及亞熱帶區域，當每年低溫期爆發流行性死亡時，就應考慮蛙壺菌病發生可能性(Berger et al. 2005; Speare et al. 2005)。
ㄧ些蛙類品種在變態數週後對壺菌特別具有感受性，若蛙群於剛變態後發現大量死亡情形，也應懷疑蛙壺菌感染症。

8.3. 確診方法(Confirmatory methods)
反轉錄聚合酶鏈反應(RT-PCR) (Hyatt et al. 2007), 標準聚合酶鏈反應(standard PCR) (Annis et al. 2004), 免疫組織學(immunohistology) (Berger et al. 2003)與組織學(histology) (Berger et al. 2000, Pessier et al. 1999) 均是高特異性與敏感性之診斷方法。

治療方法：

尚無有效治療方法。

預防控制方法：

目前對於此疾病尚未有預防及控制方法，因此只能建議蛙類養殖場使用SPF無特定病源之種蛙及提供良好的生物防護環境來預防本病的發生。此外已受感染之養蛙場應避免再將蛙運送到未受本病感染的區域。4%次氯酸鈉可用來消毒場池或器具，另外臭氧也可用來做水的消毒。

相關圖片：

( 版權為謝嘉裕所有，本所已取得使用版權)

參考文獻：

Bollinger, T. K., Mao, J. H., Schock, D., Brigham, R. M. & Chinchar, V. G. (1999) Pathology, isolation, and preliminary molecular characterization of a novel iridovirus
from tiger salamanders in Saskatchewan. Journal of Wildlife Diseases 35, 413-429.
Cunningham, A. A., Langton, T. E. S., Bennett, P. M., Lewin, J. F., Drury, S. E. N., Gough, R. E. & MacGregor,S. K. (1996) Pathological and microbiological findings from incidents of unusual mortality of the common frog (Rana temporaria). Philosophical Transactions of the Royal Society of London - Biological Sciences, 351, 1539-1557.
Cunningham, A. A., Hyatt, A. D., Russell, P. & Bennett, P.M. (2007) Emerging epidemic diseases of frogs in Britain are dependent on the source of ranavirus agent and the route of exposure. Epidemiology & Infection in press.
Cunningham, A. A., Tems, C. A. & Russell, P. H. Immunohistochemical demonstration of ranavirus antigen in the tissues of infected frogs (Rana temporaria) with systemic
haemorrhagic or cutaneous ulcerative disease. Journal of Comparative Pathology in press.
Hyatt, A. D., Gould, A. R., Zupanovic, Z., Cunningham, A. A., Hengstberger, S.,Whittington, R. J., Coupar, B. E. H.(2000) Characterisation of piscine and amphibian iridoviruses. Archives of Virology 145, 301-331.
Mao, J., Green, D. E., Fellers, G. & Chinchar, V. G.(1999) Molecular characterization of iridoviruses isolated from sympatric amphibians and fish. Virus Research 63,45-52.
Jancovich, J. K., Davidson, E. W., Morado, J. F., Jacobs,
B. L. & Collins, J. P. (1997) Isolation of a lethal virus from the endangered tiger salamander Ambystoma tigrinum stebbinsi. Diseases of Aquatic Organisms 31, 161-167.
Miocevic, I., Smith, J., Owens, L. and Speare, R. Ultraviolet sterilisation of model viruses important to finfish aquaculture in Australia. Australian Veterinary Journal 1993;70:25-27.
Reddacliff, L. A. & Whittington, R. J. (1996) Pathology of epizootic haematopoietic necrosis virus (EHNV) infection in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss Walbaum) and redfin perch (Perca fluviatilis L.). Journal of Comparative Pathology 115, 103-115.

參考連結：

檔案下載：