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傳染性胰壞死症
疾病代碼: DIS00194
建立日期: 2009/03/04
更新日期: 2009/09/24
作 者: 趙嘉本
中文病名: 傳染性胰壞死症
英文病名: infectious pancreatic necrosis
疾病描述: 1.病原概述
病原型別:病毒(virus)
病原環境: 海水淡水、半淡鹹水 (Brackish Water, Marine 、freshwater)

學名:

病名(及俗名):acute catarrhal enteritis

最早發現者:Wolf, snieszko et al 1960

OIE狀況:表列(Listed)

病原摘要:病毒顆粒為二十面體,其大小約60nm(fig1),具有兩段雙股RNA (bi-segmented double –stranded RNA),由分離之病毒之中和試驗 (neutralization tests)顯示,可區分成兩組無交叉反應之serogroups。主要之病毒 strains 是屬於serogroup A,serogroup A 中最少可區分到9個serotypes,且毒力有明顯之差異。
病毒其有2條nucleotides,其較小為2,784bp 其encodes 為VP1,此與病毒之RNA-dependent RNA polymerase 有關 (Dobos 1995),
另一條其大小為3,097bp其 具有2個 overlapping open reading frames. 其一較短為一約17-kDa arginine-ric 之非結構性蛋白(VP5),另一較長為一約 106-kDa 蛋白,其順序為NH2-pVP2-VP4-VP3-COOH,其中VP2及VP3 皆為結構性蛋白(Villanueva 2004)。


人畜共通:無(No)
病原分類
2.病原分類
屬於Birnaviridae 科中 Aquabirnavirus


命名沿革:重要的幾次命名歷史文獻


疾病特性
感染組織及器官:感染路徑、好發組織器官



疾病型態及流行病學:急性慢性型態、器官傳播分佈情形

本病為一高度傳染性之病毒性疾病,感染後魚隻之死亡率(mortality)與魚品種(species)、年齡(age)、魚隻生理情況(physical condition of the fish)及所感染之病毒strain 有關(Bruslind et al 2000),但一般其感受性會隨年齡增加而減少。

大部份有鮭魚養殖國家或地區皆有本病發生,如北美、南美、歐洲及亞洲等。病毒可經由水而達水平感染亦可經卵而行垂直感染,研究中魚卵經碘之表面消毒仍無法防止垂直感染。(Bullock 1976)

病毒可感染海水養殖魚種如 yellowtail (Seriola quinqueradiata) , turbot (Scophthalmus maximus)、dab (Limanda limanda) 、 halibut (Hippoglossus hippoglossus) 及 Atlantic cod (Gadus morhua) 。

淡水及半淡鹹水中被偵測到有潛在感染之魚種包括 loach (Misgurnus anguillicaudatus) 、 pike (Esox lucius) 及在 Anguillidae, Atherinidae, Bothidae, Carangidae, Cotostomidae, Cichlidae, Clupeidae, Cobitidae, Coregonidae, Cyprinidae, Esocidae, Moronidae,Paralichthydae, Percidae, Poecilidae, Sciaenidae, Soleidae and Thymallidae等科中之多種魚種。(OIE 2006)



臨床症狀及病理學:
傳染性胰壞死症(infectious pancreatic necrosis)是一高度傳染性之疾病,尤其對於養於高密度下之魚苗,染病後出現體色變黑(darkening pigmentation)、腹部會腫大(distended abdomen)同時會有不正常之泳姿如螺旋狀游泳(corkscrewing or spiral swimming motion)。

於鮭魚感染IPNV後之主要病變在於胰臟(pancrease)及腸粘膜(intestinal mucosa),胰臟主要以腺泡壞死(acinar cell necrosis )為主要病變。但有些研究中IPNV會以肝臟為其主要感染器官( target organ) (Roberts 2001)。
於其它之魚種如turbot 及 halibut 肝臟是最常被感染之主要器官,切片下可見到肝細胞之大量壞死 (hepatocyte necrosis) (Wood et al 1996.),如成為帶原之魚隻(persistently infected fish)病毒可於其巨噬細胞(macrophages)中發現(Munro et al 2004)。

病原致病性意義:實際魚場及田間發病、抗藥性等情形
診斷方法: 臨床上以魚苗之感受性較高病魚具有體色變黑腹部會腫大、不正常之泳姿等。病理切片上可見胰臟腺泡細胞之壞死肝臟細胞之壞死

如病魚可使用螢光抗體法(indirect fluorescent antibody test)(OIE 2006)

細胞培養:具有感受性之細胞含 Chinook salmon embryo cells (CHSE-214; ATCCCRL-1681) 、BF-2 (bluegill fibroblast)。

分子生物學(PCR)Barlic-Maganja 2002 其所引用之引子對(Blake et al.1995)可測定IPNV
引子對分別為
IPN-1F 5-TGAGATCCATTATGCTTCCAGA-3 151-172(vp2)
IPN-1R 5-GACAGGATCATCTTGGCATAGT-3 1309-1330(VP2)
另其設計一Seminested PCR 引子
IPN-2Fa 5-GCCGACATCGTCAACTCCAC-3 807-826(VP2 )
其所使用之反應條件為在GeneAmp PCR system 2400 機器下48℃ 45 分鐘合成cDNA 之後PCR 條件為94℃ 2 分鐘 ,40個循環為94℃ 30秒、54℃ 1分鐘、68℃ 2 分鐘,最後68℃ 7分鐘。
Seminested PCR 所使用之條件為40個循環分別為96℃ 1分鐘、54℃ 45秒、72℃ 45秒 最後72℃ 10分鐘。


Rodriguez Saint-Jean 2001 所使用之引子
V1: 5-GAACCCCCAGGACAAAGT-3
V2: 5-TGATTGGTCTGAGCACGC-3.
亦可在病毒量在1×103 TCID50/ml, 以上偵測到病毒
治療方法:
預防控制方法: 詳細討論疫苗發展現況及飼養管理控制現況
上市之疫苗可供有效防治用如 intervet 公司所生產之Norvax® Compact : 是一種以腹腔注射多價不活化之疫苗可同時防治Atlantic salmon. 之furunculosis, 弧菌及 infectious pancreatic necrosis (IPN) 等。(資料下載由http://aqua.intervet.com)

或AquaVac™ IPN 是種口服防治 IPNV之疫苗(資料下載由http://www.spaquaculture.com/default.aspx?pageid=657
相關圖片:
IPNV 病毒顆粒其大小約60 nm 屬於20面體( Einar Everitt) 圖片參考來源:http://www.cob.lu.se/virology/proj_descr.html
參考文獻: Barlic-Maganja D, Strancar M, Hostnik P, Jencic V, Grom J. Comparison of the ef®ciency and sensitivity of virus isolation and molecular methods for routine diagnosis of infectious haematopoietic necrosis virus and infectious pancreatic necrosis virus. J Fish Dis 25: 73-80, 2002.

Blake SL, Schill WB, McAllister PE, Lee M, Singer JT, Nicholson BL. Detection and identifcation of aquatic birnaviruses by PCR assay. J Clin Microbiol 33; 835-839, 1995.

Bruslind, L. D., and P. W. Reno. Virulence comparison of three Buhl-subtype isolates of infectious pancreatic necrosis virus in brook trout fry. J. Aquat. Anim. Health 12:301–315, 2000.

Bullock G.L, Rucker RR, Amend D, Wold K, Stuckey HM. Infectious pancreatic necrosis: transmission with iodine-treated and non-treated eggs of brook trout (Salvelinus fontinalis). J Fish Res Board Can., 33: 1197-1198, 1976.

Dobos, P. Protein-primed RNA synthesis in vitro by the virion associated RNA polymerase of infectious pancreatic necrosis virus. Virology 208: 19–25, 1995.

Munro E, Gahlawat SK, Ellis AE. A sensitive non-destructive method for detecting IPNV carrier Atlantic salmon, Salmo salar L., by culture of virus from plastic adherent leucocytes. J Fish Dis 27:129–134, 2004.

Roberts RJ. Fish pathology. Third edition Harcourt Publishers Limited. P213-214, 2001.

Rodriguez Saint-Jean S, Borrego JJ, Perez-Prieto SI. Comparative evaluation of five serological methods and RT-PCR assay for the detection of IPNV in fish. J Virol Methods 97: 23–31, 2001.

Villanueva RA, Galaz JL, Valde´s JA, Jashe´s MM, Sandino AM. Genome Assembly and Particle Maturation of the Birnavirus Infectious Pancreatic Necrosis Virus. J VIROL. 13829–13838, 2004.

Wolf K, Snieszko SF, Dunbar CE, Pyle E. Virus nature of infectious pancreatic necrosis in trout. Proc. Soc. Exp.Biol. Med. 104: 105-108,1960.

Wood BD, Bruno DW, Ross K. Infectious pancreatic necrosis virus (IPNV) mortalities among farmed Atlantic halibut, Hippoglossus hippogolssus L.,in Scotland.Bull Tur Ass fish pathol.16:214-216,1996.
參考連結:
檔案下載: